Potential selection driving evolution of long corolla tubes and case studies
-
摘要:
多样的花冠形态具有保护花内性器官、吸引传粉者等多种作用,管状花的出现被认为是花瓣演化的一个变革性事件。自达尔文以来,学者们试图回答的一个经典问题是:长花冠管的演化是否由传粉者口器与花冠管之间长度的“军备竞赛”引起?人们已在长花冠管的多个类群中开展了实验,试图寻找交互选择引起的动植物之间协同演化的证据。本文总结了影响植物花冠管长演化的生物因素和非生物因素,探讨了传粉者、盗蜜者、植食者、光照、水分等因素在花冠管长演化中扮演的角色,重点梳理了传粉者介导花冠管长演化的4个潜在路径,以期为进一步探究植物花冠管长度的演化提供新的思路和方向。
-
关键词:
- 花冠管长 /
- 传粉者介导选择 /
- 花部特征演化 /
- 协同演化 /
- 植物-传粉者相互作用
Abstract:Diverse corolla morphologies are thought to function in protecting sexual organs within flowers and attracting pollinators. The transition from open to tubular flowers is considered a key innovation in the evolution of corollas. A classic question that scholars have tried to answer since Darwin is: was the evolution of long corolla tubes caused by an arms-race relationship between the proboscis of the pollinator and the length of the corolla tube? Phenotypic manipulations have been conducted across multiple species with long corolla tubes to elucidate the mechanisms underlying the co-evolution between flowers and their interacting animal agents, driven by reciprocal selection. In this review, we summarize both the biotic and abiotic factors affecting corolla tube length, including the effects of pollinators, nectar robbers, and herbivores, as well as environmental factors like light and water availability. Moreover, we propose four potential evolutionary pathways for the development of pollinator-mediated long-tubed corollas. This review aims to provide insights and guidance for future studies on the evolution of tubular flowers.
-
山地地区既是生物多样性和遗传多样性的宝库,也是维持全球陆地生态系统平衡重要的组成部分[1, 2]。当今山地生物多样性的形成与演化受长时间尺度地质运动、气候变迁、地貌变化和生态过程的影响,最终落脚于物种形成、适应性进化、拓殖、物种存续和灭绝事件的综合过程[2]。值得注意的是,在大部分生物多样性富集的山地生态系统中都具有明显的垂直地带性差异,即从低海拔分布的森林生物区到高海拔分布的高寒生物区。其中,高寒生物区的形成与山体隆升的幅度及历史环境的变迁密切相关,对认识山地生物多样性形成具有关键性的意义。
高寒生物区位于天然树线以上,永久雪线以下,在各大洲的高山中都有分布,面积约占全球陆地面积的3%,其海拔分布范围因所处纬度不同,自低纬度向高纬度海拔逐渐降低,与各地区树线以及山峰冰川和雪线的高低密切相关(图1)。就植被类型而言,高寒生物区主要包括高山灌丛,草甸和冰缘带植被等[3]。由于低温(昼夜温差大)、大风、空气稀薄、紫外辐射强烈等独特的环境因素影响,高山植物普遍表现出与高山树线以下非乔木生活型植物显著不同的部分形态和生理属性,其植物区系组成主要是适应冰雪或严寒生境的低矮或匍匐状的灌木、禾草型植物、多年生草本、莲座状植物和各种类型的垫状植物[3]。据估计,全球高寒生物区大概有8 000 ~ 10 000种高等植物,分属于大约100个科和2 000余个属,占已知高等植物总数的4%左右[3]。虽然就植物多样性而言,高寒生物区植物种类比热带、亚热带雨林低,但因其自然环境严酷,植物区系极其特殊,同时对全球变暖非常敏感,生态系统极其脆弱,全球气候的变暖将使树线升高,压缩该植被带的范围,使物种灭绝的风险大大增加[4, 5],因此长期以来都是生物和生态学家关注的焦点。
图 1 高寒生物区分布图A:高寒生物区在全球的分布(平均海拔3 000 m左右),苔原用蓝色表示。全球SRTM 500 m DEM数据和60ºN以上的高程数据来自30弧秒分辨率全球多分辨率地形高程数据2010(GMTED2010);苔原依据WWF的划分标准。B:从赤道到两极主要山脉的高寒生物区海拔高度变化示意图(修改自Körner [3])。Figure 1. Distribution map of world alpine biomeA: Alpine regions are shown in color, tundra regions are shown in blue and non-alpine regions are shown in different degrees of gray. SRTM 500 m and latitude above 60°N are derived from the Global Multi-resolution Terrain Elevation Data 2010 (GMTED2010) at 30 arc-second resolution. Tundra is depicted based on WWF global biome classification. B: Schematic of altitudinal position of alpine life zone from Arctic to Antarctic latitudes (modified from Körner[3]).高寒生物区作为山地地区海拔最高的生态系统,其形成与区域造山运动和气候变化密切相关,尤其在中低纬度地带,只有山体隆升到一定高度才有可能形成高寒生境,为高寒植物的拓殖和分化创造条件。例如,安第斯Páramos起源时间大概在3.5 Ma左右,与安第斯山北部地区隆升至现在高度的时间一致,同时受到第四纪冰期的塑造作用[6];新西兰的南阿尔卑斯山地区的高寒生物区不早于5 Ma[7, 8],研究表明能够适应高寒生境的类群形成始于山体抬升到一定高度并且气候变冷时,到1.9 Ma 高寒生境广泛且持续存在时,新西兰高寒生物才开始迅速多样化[7, 8];而高寒植物拓殖到东非高寒生物区的时间大概在5-10 Ma,这个时间晚于许多东非高山在渐新世的造山运动,其现今高寒植物多样性格局的形成主要受到更新世气候波动的影响[9]。泛青藏高原地区是全球温带高寒植物多样性最高的区域,也是山地生物多样性研究的热点和难点区域。长期以来,该地区的生物学研究受到早期地质学上整体抬升或近期快速隆升观点的影响,忽视了地域的差异性以及对最新地质学观点的吸纳,随着对青藏高原各地块构造演化历史研究的加深,我们对该地区生物多样性形成与演化的认识也有了长足的进步。青藏高原在地质历史时期经历了复杂而大规模的构造环境变化[10, 11],这一系列的地质运动不仅塑造了该地区复杂的地形地貌,引发了东亚季风系统的改变[12-14],也深刻影响着该地区植物多样性的形成与发展。目前,该地区的生物多样性研究已经逐步迈入到地质-气候-生物过程的交叉研究阶段[15, 16],未来多学科的贯穿融合也必将成为深入揭示该地区生物多样性演化过程及其形成机制的重要手段。
基于此,本文在综合考虑诸如造山运动和气候变化等地球物理过程如何影响高寒物种的积累和多样化过程,以及自然选择和杂交等在维持其生物多样性中发挥的作用,概述了青藏高原及其周边地区高寒植物多样性的起源和演化节奏、成分来源和区系交流及其内外驱动机制等方面的重要研究进展。
1. 青藏-喜马拉雅-横断山地区环境异质性和高寒植物多样性
1.1 青藏-喜马拉雅-横断山地区地质历史背景及现代地理环境差异
从地质构造上看,泛青藏高原并非整体抬升,它由来源和抬升历史不同的地块组成(图2)[17, 18]。构成青藏高原核心的羌塘地块和拉萨地块均来自南半球的冈瓦纳大陆,冈瓦纳大陆裂解后这两个地块北漂,分别于晚三叠世和早白垩世拼合成为欧亚大陆的一部分[19]。随着古高程研究的进一步深入,青藏高原隆升过程的复杂性和块体间差异被逐渐认识。藏南拉萨地块冈底斯山至少在51 Ma 以来就来一直保持着4 500 m以上的海拔[20]。从始新世到晚渐新世,印度-亚洲板块加速汇聚,由板块汇聚导致的地壳挤压增厚使西藏中部和南部进一步抬升[21]。直到新近纪,青藏高原主体中部高地才完全形成[22],到了中中新世,喜马拉雅才隆升至接近现在的高度[23]。横断山一直被认为是在晚中新世到上新世形成的[24],然而,最新的化石和构造证据表明,横断山部分地区在早渐新世就已经达到了接近现代的海拔高度[25]。考虑到高原腹地、横断山和喜马拉雅在形成时间、隆升节奏、地形地貌和气候条件等差异对区域生物多样性的形成与演化的影响[18],有必要将高原腹地、喜马拉雅和横断山区这3个地区区分来看[18, 26, 27](图2)。
青藏高原腹地的范围是指由广大高原面构成的主体,是阿尔金断裂以南,雅鲁藏布江缝合带以北,喀喇昆仑山脉走滑断层以东,秦岭、横断山以西,包括昆仑-祁连盆岭(山-盆)区[18, 26, 28]。高原腹地深处大陆内部,且高山环绕,在漫长的地质历史中经历了从湿润-半湿润-半干旱-干旱-极端干旱的气候转变[29],演化成今天包含多种生活型的高寒生态系统[30, 31],一般从东南向西北地势越高种类越少,大体上以草甸灌丛、荒漠草原和冰缘带植被为主,局部地区仍有小面积的森林和零星的森林树种分布[30]。
横断山地处广义青藏高原的东南缘,地域涵盖滇西北、川西、藏东和藏东南延伸至青海东南部和甘肃西南部,由数列南北近平行的山脉组成[26, 32],区域内河流深切,山体平均海拔从川西藏东的4 000 ~ 5 000 m到云南南部地区的2 000 m左右,其中5 000 m以上的极高山和3 500 ~ 5 000 m的高山占到总面积的73%,最高峰贡嘎山的海拔为7 556 m,而山脚海拔仅为1 100 m,岭谷之间相对高差悬殊[33],是世界上特殊环境类型最多的地域之一[34]。与寒旱少雨的青藏高原腹地相比[29],东南部的横断山地区受西南季风及东南季风的双重影响夏季多雨湿润,且高山峡谷逶迤南北,悬殊的谷、岭高差,导致其气候、植被和土壤巨大的垂直分异[35, 36]。由于其地理位置特殊及生境复杂多样,其南端与东南亚热带北缘相邻接,北部及西北部向青藏高原高寒地带过渡,各类植物区系成分交错混杂,形成了齐全的从河谷至高山的垂直植被带。
喜马拉雅山位于青藏高原南部,由数条大致东西向平行的支脉组成并向南凸出呈弧形。它西起克什米尔的南迦-帕尔巴特峰,东至雅鲁藏布江大拐弯处的南迦巴瓦峰,是印度河-雅鲁藏布江缝合带(也是印度板块和欧亚板块的界限)以南,主边界断层以北的地区(图2)[26, 27]。其南北向的断裂构造发育,经河流切割形成纵向深险峡谷,成为西南季风气流北进的通道。喜马拉雅山西部紧挨着兴都库什山系,东边紧靠印度-缅甸,北部紧靠喀喇昆仑山脉和冈底斯山。由于其独特的地理位置及周围毗邻地区生态环境的显著差异,喜马拉雅植物区系包含了许多不同的地理成分(东亚成分,马来-缅甸成分和中亚细亚及地中海成分等),植物区系和植被景观也呈现出明显的垂直地带性,其中热带成分在低海拔地区占优势,东亚温带成分则在亚高山和高山地带占优势,该地区不存在真正的特有科,特有属也不多[37],特有种主要在中高海拔地区[38]。
1.2 青藏-喜马拉雅-横断山地区高寒植物多样性
受区域地质构造历史及其环境异质性的影响,青藏高原腹地、喜马拉雅和横断山的高寒植物物种的丰富度和演化历史也表现出区域间的差异性和交融性。其中,横断山的高寒生物多样性尤其丰富。根据张大才和孙航[39]统计,在横断山4 100 m以上的海拔范围共有种子植物70科297属1 820种,而这一数字很可能低估了横断山高寒地区的植物多样性,因为横断山地区的树线在很多山区可下探至3 500 m左右(图3)。据最近的统计结果,除亚种和变种外,横断山高寒地区种子植物可达3 030种,其中包括12种裸子植物[40],远高于面积更广阔的青藏高原腹地(种子植物1883种)[30, 41],和喜马拉雅地区(据统计,以尼泊尔为代表的中喜马拉雅地区共有高寒种子植物1 227种,而西喜马拉雅则记录有约830种)[42, 43]。在植物区系的研究中,武素功等[30]指出,青藏高原主体的高寒植物区系属于中国-喜马拉雅区系的衍生或组成成分,缺乏古特有属,大部分类群是从分布较广、尤其是横断山和青藏高原低海拔的一些属种衍生而来。
2. 青藏-喜马拉雅-横断山地区高寒植物多样性演化历史
2.1 青藏-喜马拉雅-横断山地区高寒植物多样性的起源及演化节奏
从全球高寒植物多样性的形成历史来看,高寒植物区系是一个比较年轻的生物区,主要受到晚中新世以来各大洲山体最后阶段的抬升和第四纪冰期的驱动[7, 45, 46]。然而,相对于其他高寒生物区,青藏高原-喜马拉雅-横断山地区的高寒植物多样性更为丰富也更加古老,受到区域构造隆升和气候变化的强烈影响。
近几年,在青藏高原及其周边地区基于关键类群和特有类群在分子水平上开展了大量的谱系地理和生物地理学研究,为认识该地区重要类群的起源和高寒植物多样性演化发挥了重要作用。例如,Luo 等[47]对横断山-喜马拉雅冰缘带特有的4个物种的谱系地理分析结果表明,4种植物主要分化于晚上新世至早-中更新世;一些特有种比例较高的属,例如,毛冠菊属(Nannoglottis)、川木香属(Dolomiaea)、重羽菊属(Diplazoptilon)、黄缨菊属(Xanthopappus)、无心菜属(Arenaria)中的垫状类群以及高山竹类也是在上新世-第四纪快速分化[48-52];而橐吾(Ligularia)-垂头菊属(Cremanthodium)-蟹甲草属(Parasenecio)[53]、风毛菊属(Saussurea)[54]、锦鸡儿属(Caragana)[55]、绿绒蒿(Meconopsis)[56]、大黄属(Rheum)[57]和红景天属(Rhodiola)[58]则是在中中新世至晚中新世发生了快速多样化。然而,更古老的拓殖和分化事件仍然发现于其他广布且多样化的类群当中。Ebersbach等[59] 通过虎耳草属(Saxifraga)的生物地理分析把高寒类群拓殖于青藏高原的时间推进到晚始新世(49-34 Ma),与当时西藏南部已经有超过4 000 m的高山相吻合[20];随后的多样化发生在10-4 Ma认为是受到较晚抬升的横断山构造活动的影响。龙胆属(Gentiana)在始新世(40-34 Ma)起源于青藏高原及其周边地区,除了晚中新世-早上新世的突然加快,自晚始新世以来多样化速率增加缓慢[60]。Zhao 等[61]对喜马拉雅-横断山分布的高山姜类的研究发现,大概在早渐新世( ~ 32 Ma)象牙参属(Roscoea)和距药姜属(Cautleya)就与其姐妹群分化开来,而象牙参属在横断山与喜马拉雅的两个分支大概在渐新世-中新世之交分化[61]。从以上案例研究结果可以看出,青藏高原及其周边山地高寒植物的多样化过程基于不同研究类群的演化尺度,表现出了时空上的差异性,分化时间从古老到年轻,时间跨度大。另外,对广义青藏高原的笼统划分也限制了对不同地区演化历史及其驱动机制的深入理解和认识。为了克服这个问题,Ding 等[27]选取了青藏高原腹地,喜马拉雅和横断山高寒植物多样性较高的18个被子植物类群(总计包含3798种),通过应用系统发育比较方法和多类群大尺度的整合分析,重建了横断山、喜马拉雅以及青藏高原主体高寒植物多样性连续变化的时空演化历史,将横断山高寒植物的起源时间追溯到晚始新世到早渐新世[27],并结合古生物学和地质学证据,探讨了重大地质构造事件(山体隆升)和历史气候变化对高寒植物多样性形成的影响(图4)。研究表明,在横断山地区,高寒物种就地演化速率在早中新世到中中新世(23-15 Ma)和晚中新世(10-7 Ma)加快并一直保持较高的水平,是新近纪全球降温、横断山造山运动与亚洲季风增强共同作用的结果。而在喜马拉雅地区,物种演化速率的加快比横断山晚,主要在中中新世(19 Ma 一直持续到12 Ma),与喜马拉雅的隆升节奏和夏季季风的增强有关[27]。青藏高原地区高寒植物多样性增加紧随喜马拉雅其后(18 Ma),说明现今青藏高原(腹地)的高寒植物多样性很可能是喜马拉雅隆升后发展起来的[27]。因此,横断山及其周边地区高寒生物多样性的形成是自始新世降温以后,在造山运动和季风加强的共同影响下形成的,这些因素一起为生物多样性演化提供了一个生态-进化的舞台,并且一直持续至今。
图 4 横断山、喜马拉雅和青藏高原腹地高寒地区生物多样性演化速率与气候变化和地质历史之间的关系(修改自Ding 等[27])A:全球气候变化曲线来自深海氧同位素记录[64, 65]。蓝色线段表示亚洲季风演化趋势,由Farnsworth 等[66] 在理想CO2下模拟的青藏高原及其周边地区各地史阶段的年平均降水量表示。B:喜马拉雅(HIM)、青藏高原腹地(TP)和横断山(HDM)从晚始新世至今分3个阶段的地形示意图。红色带数字的圆点表示基于最新构造证据重建古高程的地点。C:横断山、喜马拉雅和青藏高原腹地高寒生物区植物多样性速率随时间的变化。青藏高原主体图中由浅至深的黄色条带代表了古近纪以来青藏高原腹地的干旱化程度。Figure 4. Rates of biotic assembly in relation to climate and geological history in the Hengduan Mountains, Himalaya, ibetan Plateau (modified from Ding et al.[27])A: Evolution of global climate is represented by deep-sea oxygen-isotope records[65] and estimated deep ocean temperatures by Hansen et al. [64]. Monsoon conditions are indicated by modeled mean annual precipitation (m) for each geological stage, represented by blue lines at idealized CO2 (solid blue circle) (modified from Farnsworth et al. [66]). B: Schematic of topography of the Himalaya (HIM), the Tibetan Plateau (TP), and the Hengduan Mountains (HDM) in three phases, from late Eocene to the present. C: Rolling estimates of rates through time in the HDM, HIM, and TP. Light to dark yellow bar in the last panel represents intensity of aridification in the TP since the Paleogene.2.2 青藏-喜马拉雅-横断山地区高寒植物的成分来源和区系交流
横断山和喜马拉雅的高寒植物多样性积累均以就地演化为主,而高原腹地则以迁入为主。此外,横断山高寒生物区和喜马拉雅、高原腹地之间还有着非常密切的区系联系,是喜马拉雅和青藏高原高寒生物多样性的主要供给地[27]。相比之下,横断山中低海拔要远高于其邻近高寒生物区对横断山高寒生物区的贡献,这可能与横断山整体上的温带植物区系性质有关,横断山也被认为是北温带分布型属的起源和分化中心[62]。喜马拉雅地处中纬度地区,下接亚热带气候类型,上接温带气候类型,直到早中新世-中中新世以后才快速隆起,而邻近的横断山和青藏高原地区隆升历史较早,尤其是横断山复杂的地形地貌维持了比较高的高寒生物多样性[62],因此,已经预适应高寒的横断山类群是喜马拉雅高寒生物区的重要来源。Hörandl和Emadzade[63]通过对毛茛属(Ranunculus)的生物地理研究也得出喜马拉雅地区的高寒类群,相对于从其他地方通过长距离扩散迁移过来(例如北极地区,中亚和北亚以及从台湾高山地区),从中低海拔就地演化而来的较少。另外,植物区系调查结果表明,喜马拉雅的特有成分主要集中在高寒/亚高山地带[38]。由此可见,喜马拉雅的快速隆升所形成的高寒地带为随后的迁移和就地演化创造了条件。由于隆升过程始终占主导地位,因而可以像横断山一样的温带成分得到极大地发展。
更新世冰期时,由于山岳冰川发育,树线比现在低,邻近山地高寒生物区之间的交流频率增加[67]。即使是位于赤道附近的埃塞俄比亚高地和乞力马扎罗山在冰期时高寒生物区的海拔也比现在低1 000~1 500 m[68],使得冰期时高寒生物区之间的联系更加密切。在以往的谱系地理研究中也发现,虽然不同物种在冰期、间冰期的扩张方式不同,但都多次出现从横断山回迁到青藏高原腹地的情况[69]。Ding 等[27]研究也发现,贯穿第四纪从横断山扩散到其周边地区,尤其是迁移到青藏高原的速率快速增加。
2.3 青藏-喜马拉雅-横断山地区高寒植物多样化的内在驱动力
长期以来的地质活动(山体隆升、河流重组等)和气候演变不断地塑造着青藏高原及其周边地区的地形地貌,由此产生的新生境、局域环境的改变和生态位的分化为物种形成、演化和迁移创造了机会[27, 70]。较高的生境异质性和气候的反复波动不仅促进了不同居群间的隔离和遗传分化[71],沿海拔梯度不同强度的自然选择压力以及局域微生境的多样化也使得有限的区域内居群承受的生态选择压力不同,进而导致生殖隔离的产生和同域物种形成[72]。大量群体基因组学的分析还发现基因流在青藏高原及其周边山地很多植物类群的物种形成过程中普遍存在,这可能受到第四纪气候震荡或者河流袭夺事件的影响,使得尚未分化完全的物种有了再次接触和基因交换的机会[73]。在一些多样化较高的类群中,如杜鹃花属(Rhododendron)[74]、龙胆属[75]等,频繁发生的种间杂交也为新物种的形成创造了机会,表明很多物种仍处于物种分化的过程当中[73]。同时,越来越多的证据指出异源多倍体对生物多样性的贡献很可能被低估。例如,蔊菜属(Rorippa)中高蔊菜(Rorippa elata (Hook. f. & Thomson) Hand.-Mazz.)和沼生蔊菜(Rorippa palustris (L.) Besser)的杂交起源及它们在横断山区从南到北反复拓殖的群体历史,表明多倍体物种种群扩张过程中种群的适应能力呈现出沿纬度梯度提高的趋势,多倍体可以通过调整适应性来应对扩张过程中的选择压力[76]。因此,生物因素(杂交,多倍化,基因渐渗)和生态过程(自然选择,适应性进化)作为物种形成和分化的内在驱动力,与构造运动和气候变化等外营力共同作用,在维持该区域遗传多样性和生物多样性上扮演着重要角色。
3. 展望
随着基于近几年对泛青藏高原构造演化历史及其所引发的气候演变的认识逐步加深,本文以不同地理单元的划分作为切入点,归纳并总结了横断山、喜马拉雅和高原腹地高寒植物多样性演化历史、过程及其形成机制的重要研究进展。首先,根据各地的环境差异和构造背景界定不同的生物地理区,如,横断山、喜马拉雅和青藏高原腹地的划分,进而比较其多样性形成历史的异同,在一定程度上解决了长期以来因为地域界定问题由不同类群推演出来生物地理历史和多样性成因互存争议的局面。此外,本文还阐述了杂交、多倍化和基因渐渗等生物过程在活跃的构造运动和气候波动下维持区域生物多样性的重要作用。
青藏高原及其周边山脉活跃的构造抬升、季风气候的加强以及更新世的冰川作用等环境变化深刻塑造了泛青藏高原的地形地貌和气候环境的异质性,为该地区的物种分化和形成创造了条件。自然选择、适应性进化和杂交作为物种多样性形成的内在驱动力,在维持该区域遗传多样性和生物多样性上也扮演着重要角色。泛青藏高原地区独特的地理环境和复杂的构造演化背景,在一定程度上对我们深入揭示其多样性的形成和维持机制提出了挑战,也正因如此,未来该地区的生物多样性研究势必推动生物学和地质学等多学科的交叉融合,通过地质-气候-生物的过程的耦合关系和相互作用的研究加深对地球环境变化和生物演化过程的认识。
不同山地地区现代环境、地形地貌差异显著,地质背景和环境演化历史迥异,其生物多样性的演化历史必然也呈现出时空格局上的差异。深入比较不同山地生物多样性形成演化历史的异同及与各自环境变化的关系、揭示其间的联系无疑将加深对现今山地生物多样性分布格局的理解。例如,以欧亚山地生态系统为代表的横断山、喜马拉雅、天山、高加索山和阿尔卑斯山,它们彼此在共有植物科属组成上都具有一定相似性,包括了以菊科、禾本科、十字花科、豆科、毛茛科、石竹科、蔷薇科、莎草科、虎耳草科、景天科、报春花科、紫堇科、龙胆科、百合科以及一些灌木类群,如杜鹃花科、小檗科、杨柳科等为代表的一些高寒植物类群,组成了欧亚大陆甚至北半球高寒生物区最主要的植物种类和多样性[3, 31, 77]。不同区域的构造演化和气候变化历史是否影响了它们之间的物种交流,又是否导致了这些山地地区间生物多样性的形成、演化历史的差异?利用这些在不同山区广泛分布的特征植物类群,比较其物种多样化的过程和联系,将有助于回答以上问题。此外,高寒生物区严苛的自然环境所造成的选择压力是否导致了不同类群在功能形态上的趋同演化或繁殖策略的改变,例如,与高寒植物的适应性进化策略相关的某些关键形态性状—温室结构、棉毛结构及垫状结构,这些特殊的生活型或生理代谢等有时会同时出现在亲缘关系较远的类群中。把这些关键性状的演化与特定生物区的演化结合起来分析并探究其适应性和内在遗传机制,将会进一步加深我们对生物多样性在不同时间尺度和驱动因素下演变的认识。
-
图 1 花冠管长度及其相关特征的研究系统示例
A:毛茛科鸦跖花(Oxygraphis glacialis Bunge)的开放皿状花,白色箭头示花瓣基部的蜜槽;B:毛茛科加拿大耧斗菜(Aquilegia canadensis L.)的5个离生花瓣均特化出长的花蜜距,白色箭头示花蜜承载量;C:杜鹃花科的一种欧石楠(Erica cerinthoides L.)的管状花冠,插入小图为非管状花的映山红(Rhododendron simsii Planch.)品种;D:喀什米尔熊蜂(Bombus kashmirensis Friese)在甘肃马先蒿(Pedicularis kansuensis Maxim.)上盗取花蜜,粉色箭头示其口器刺破花管基部;E:红腹熊蜂(Bombus friseanus Skorikov)访问具有长花冠管的三色马先蒿(Pedicularis tricolor Hand. -Mazz.),白色箭头示人工缩短花冠管长度的操作处理;F:为探究马先蒿属植物丢失花蜜的适应意义,在以花粉为报酬的二歧马先蒿(Pedicularis dichotoma Bonati,白色箭头示花蜜残留液面)花上创造人工添加花蜜(粉色箭头)的实验花[75]。照片拍摄:黄双全。
Figure 1. Examples of system for studying corolla tube length and related traits
A: Open dish-shaped flower of Oxygraphis glacialis Bunge, white arrow shows nectary at the bottom of the petal; B: Five separate petals of Aquilegia canadensis L., which have specialized long nectar spurs, white arrow shows position of nectar drop; C: Tubular corolla of Erica cerinthoides L, with lower-left image showing non-tubular flower of Rhododendron simsii Planch; D: Bombus kashmirensis Friese individual robbing nectar from Pedicularis kansuensis Maxim., pink arrow shows proboscis of bee piercing the bottom of the corolla tube; E: Bombus friseanus Skorikov individual visiting long-tubed Pedicularis tricolor Hand.-Mazz., white arrow shows artificially shortening of corolla tube length; F: To investigate the significance of nectar loss, artificial nectar was added to the corolla tube of pollen-rewarding P. dichotoma Bonati, white arrow shows position of naturally residual nectar, pink arrow shows position of added nectar. Photos credits: Huang Shuang-Quan.
-
[1] Endress PK. The evolution of floral biology in basal angiosperms[J]. Philos Transact Roy Soc B, 2010, 365(1539): 411-421.
[2] Friis EM, Crane PR, Pedersen KR. Early Flowers and Angiosperm Evolution[M]. Cambridge: Cambridge University Press, 2011: 19.
[3] Sauquet H,von Balthazar M,Magallón S,Doyle JA,Endress PK,et al. The ancestral flower of angiosperms and its early diversification[J]. Nat Commun,2017,8 (1):16047. doi: 10.1038/ncomms16047
[4] Nilsson LA. The evolution of flowers with deep corolla tubes[J]. Nature,1988,334 (6178):147−149. doi: 10.1038/334147a0
[5] Endress PK. Origins of flower morphology[J]. J Exp Zool,2001,291 (2):105−115. doi: 10.1002/jez.1063
[6] Gurung V,Yuan YW,Diggle PK. Comparative analysis of corolla tube development across three closely related Mimulus species with different pollination syndromes[J]. Evol Dev,2021,23 (3):244−255. doi: 10.1111/ede.12368
[7] Darwin CR. On the Various Contrivances by Which British and Foreign Orchids Are Fertilised by Insects[M]. London: John Murray, 1862: 1–100.
[8] Tong ZY,Wu LY,Feng HH,Zhang M,Renner SS,Huang SQ. New calculations indicate that 90% of flowering plant species are animal-pollinated[J]. Nat Sci Rev,2023,10 (10):nwad219. doi: 10.1093/nsr/nwad219
[9] Heinrich B,Raven PH. Energetics and pollination ecology[J]. Science,1972,176 (4035):597−602. doi: 10.1126/science.176.4035.597
[10] Neu A,Cooksley H,Esler KJ,Pauw A,Roets F,et al. Interactions between protea plants and their animal mutualists and antagonists are structured more by energetic than morphological trait matching[J]. Funct Ecol,2023,37 (1):176−189. doi: 10.1111/1365-2435.14231
[11] Whittall JB,Hodges SA. Pollinator shifts drive increasingly long nectar spurs in columbine flowers[J]. Nature,2007,447 (7145):706−709. doi: 10.1038/nature05857
[12] Pauw A,Kahnt B,Kuhlmann M,Michez D,Montgomery GA,et al. Long-legged bees make adaptive leaps:linking adaptation to coevolution in a plant–pollinator network[J]. Proc Roy Soc B:Biol Sci,2017,284 (1862):20171707.
[13] Egawa S,Hirose K,Itino T. Geographic changes in pollinator species composition affect the corolla tube length of self-heal (Prunella vulgaris L.):evidence from three elevational gradients[J]. Ecol Res,2020,35 (5):819−825. doi: 10.1111/1440-1703.12146
[14] Anderson B,Johnson SD. Geographical covariation and local convergence of flower depth in a guild of fly‐pollinated plants[J]. New Phytol,2009,182 (2):533−540. doi: 10.1111/j.1469-8137.2009.02764.x
[15] Van der Niet T,Pirie MD,Shuttleworth A,Johnson SD,Midgley JJ. Do pollinator distributions underlie the evolution of pollination ecotypes in the Cape shrub Erica plukenetii?[J]. Ann Bot,2014,113 (2):301−316. doi: 10.1093/aob/mct193
[16] Paudel BR,Shrestha M,Burd M,Adhikari S,Sun YS,Li QJ. Coevolutionary elaboration of pollination‐related traits in an alpine ginger (Roscoea purpurea) and a tabanid fly in the Nepalese Himalayas[J]. New Phytol,2016,211 (4):1402−1411. doi: 10.1111/nph.13974
[17] Miller-Struttmann NE,Geib JC,Franklin JD,Kevan PG,Holdo RM,et al. Functional mismatch in a bumble bee pollination mutualism under climate change[J]. Science,2015,349 (6255):1541−1544. doi: 10.1126/science.aab0868
[18] Armbruster WS,Wege JA. Detecting canalization and intra-floral modularity in triggerplant (Stylidium) flowers:correlations are only part of the story[J]. Ann Bot,2019,123 (2):355−372. doi: 10.1093/aob/mcy184
[19] Aigner PA. Optimality modeling and fitness trade-offs:when should plants become pollinator specialists?[J]. Oikos,2001,95 (1):177−184. doi: 10.1034/j.1600-0706.2001.950121.x
[20] Aigner PA. Floral specialization without trade-offs:optimal corolla flare in contrasting pollination environments[J]. Ecology,2004,85 (9):2560−2569. doi: 10.1890/03-0815
[21] Armbruster WS. Floral specialization and angiosperm diversity:phenotypic divergence,fitness trade-offs and realized pollination accuracy[J]. AoB Plants,2014,6:plu003.
[22] Pauw A,Cocucci AA,Sérsic AN. The least effective pollinator principle:specialized morphology despite generalized ecology[J]. Plant Biol,2020,22 (5):924−931. doi: 10.1111/plb.13145
[23] Arditti J,Elliott J,Kitching IJ,Wasserthal LT. ‘Good Heavens what insect can suck it’: Charles Darwin,Angraecum sesquipedale and Xanthopan morganii praedicta[J]. Bot J Linn Soc,2012,169 (3):403−432. doi: 10.1111/j.1095-8339.2012.01250.x
[24] Nilsson LA. Deep flowers for long tongues[J]. Trends Ecol Evol,1998,13 (7):259−260. doi: 10.1016/S0169-5347(98)01359-7
[25] Wasserthal LT. The pollinators of the Malagasy star orchids Angraecum sesquipedale, A. sororium and A. compactum and the evolution of extremely long spurs by pollinator shift. Botanica Acta, 1997, 110(5): 343-359.
[26] Muchhala N,Thomson JD. Going to great lengths:selection for long corolla tubes in an extremely specialized bat–flower mutualism[J]. Proc Roy Soc B:Biol Sci,2009,276 (1665):2147−2152.
[27] Abrahamczyk S,Souto-Vilarós D,Renner SS. Escape from extreme specialization:passionflowers,bats and the sword-billed hummingbird[J]. Proc Roy Soc B:Biol Sci,2014,281 (1795):20140888.
[28] Steiner KE,Whitehead VB. Oil flowers and oil bees:further evidence for pollinator adaptation[J]. Evolution,1991,45 (6):1493−1501. doi: 10.2307/2409895
[29] Pauw A. Floral syndromes accurately predict pollination by a specialized oil-collecting bee (Rediviva peringueyi,Melittidae) in a guild of South African orchids (Coryciinae)[J]. Am J Bot,2006,93 (6):917−926. doi: 10.3732/ajb.93.6.917
[30] Cosacov A,Cocucci AA,Sérsic AN. Geographical differentiation in floral traits across the distribution range of the Patagonian oil-secreting Calceolaria polyrhiza:do pollinators matter?[J]. Ann Bot,2014,113 (2):251−266. doi: 10.1093/aob/mct239
[31] Van der Kooi CJ,Vallejo-Marín M,Leonhardt SD. Mutualisms and (A) symmetry in plant-pollinator interactions[J]. Current Biol,2021,31 (2):R91−R99. doi: 10.1016/j.cub.2020.11.020
[32] Mackin CR,Peña JF,Blanco MA,Balfour NJ,Castellanos MC. Rapid evolution of a floral trait following acquisition of novel pollinators[J]. J Ecol,2021,109 (5):2234−2246. doi: 10.1111/1365-2745.13636
[33] García M,Benítez-Vieyra S,Sérsic AN,Pauw A,Cocucci AA,et al. Is variation in flower shape and length among native and non-native populations of Nicotiana glauca a product of pollinator-mediated selection?[J]. Evol Ecol,2020,34 (6):893−913. doi: 10.1007/s10682-020-10082-w
[34] Rodríguez-Gironés MA,Llandres AL. Resource competition triggers the co-evolution of long tongues and deep corolla tubes[J]. PLoS One,2008,3 (8):e2992. doi: 10.1371/journal.pone.0002992
[35] Rodríguez-Gironés MA,Santamaría L. Resource competition,character displacement,and the evolution of deep corolla tubes[J]. Am Nat,2007,170 (3):455−464. doi: 10.1086/520121
[36] Muchhala N,Brown Z,Armbruster WS,Potts MD. Competition drives specialization in pollination systems through costs to male fitness[J]. Am Nat,2010,176 (6):732−743. doi: 10.1086/657049
[37] Martins DJ,Johnson SD. Interactions between hawkmoths and flowering plants in East Africa:polyphagy and evolutionary specialization in an ecological context[J]. Biol J Linn Soc,2013,110 (1):199−213. doi: 10.1111/bij.12107
[38] Johnson SD,Raguso RA. The long-tongued hawkmoth pollinator niche for native and invasive plants in Africa[J]. Ann Bot,2016,117 (1):25−36. doi: 10.1093/aob/mcv137
[39] Johnson SD,Moré M,Amorim FW,Haber WA,Frankie GW,et al. The long and the short of it:a global analysis of hawkmoth pollination niches and interaction networks[J]. Funct Ecol,2017,31 (1):101−115. doi: 10.1111/1365-2435.12753
[40] Agosta SJ,Janzen DH. Body size distributions of large Costa Rican dry forest moths and the underlying relationship between plant and pollinator morphology[J]. Oikos,2005,108 (1):183−193. doi: 10.1111/j.0030-1299.2005.13504.x
[41] Armbruster WS. The specialization continuum in pollination systems:diversity of concepts and implications for ecology,evolution and conservation[J]. Funct Ecol,2017,31 (1):88−100. doi: 10.1111/1365-2435.12783
[42] Pi HQ,Quan QM,Wu B,Lv XW,Shen LM,Huang SQ. Altitude-related shift of relative abundance from insect to sunbird pollination in Elaeagnus umbellata (Elaeagnaceae)[J]. J Syst Evol,2021,59 (6):1266−1275. doi: 10.1111/jse.12685
[43] Opedal ØH,Albertsen E,Armbruster WS,Pérez-Barrales R,Falahati-Anbaran M,Pélabon C. Evolutionary consequences of ecological factors:pollinator reliability predicts mating-system traits of a perennial plant[J]. Ecol Lett,2016,19 (12):1486−1495. doi: 10.1111/ele.12701
[44] Ollerton J,Killick A,Lamborn E,Watts S,Whiston M. Multiple meanings and modes:on the many ways to be a generalist flower[J]. Taxon,2007,56 (3):717−728. doi: 10.2307/25065855
[45] Stebbins GL. Adaptive radiation of reproductive characteristics in angiosperms,I:pollination mechanisms[J]. Ann Rev Ecol Syst,1970,1:307−326. doi: 10.1146/annurev.es.01.110170.001515
[46] Tang YF,Fang Y,Liu CQ,Lu QB,Hu XH. The long spur of Impatiens macrovexilla may reflect adaptation to diurnal hawkmoth pollinators despite diversity of floral visitors[J]. Flora,2020,266:151599. doi: 10.1016/j.flora.2020.151599
[47] Baker HG. “Mistake” pollination as a reproductive system with special reference to the Caricaceae[M]//Burley J, Styles BT, eds. Tropical Trees: Variation, Breeding and Conservation. New York: Academic Press, 1976: 161-169.
[48] Davis CC,Schaefer H,Xi ZX,Baum DA,Donoghue MJ,Harmon LJ. Long-term morphological stasis maintained by a plant-pollinator mutualism[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2014,111 (16):5914−5919. doi: 10.1073/pnas.1403157111
[49] Armbruster WS. Evolution of plant pollination systems:hypotheses and tests with the neotropical vine Dalechampia[J]. Evolution,1993,47 (5):1480−1505. doi: 10.2307/2410162
[50] Riska B. Some models for development,growth,and morphometric correlation[J]. Evolution,1986,40 (6):1303−1311. doi: 10.2307/2408955
[51] Riska B. Composite traits,selection response,and evolution[J]. Evolution,1989,43 (6):1172−1191. doi: 10.2307/2409355
[52] Hansen TF,Armbruster WS. Carlson ML,Pélabon C. Evolvability and genetic constraint in Dalechampia blossoms:genetic correlations and conditional evolvability[J]. J Exp Zool Part B:Mol Dev Evol,2003,296B (1):23−39. doi: 10.1002/jez.b.14
[53] Armbruster WS. Multilevel analysis of morphometric data from natural plant populations:insights into ontogenetic,genetic,and selective correlations in Dalechampia scandens[J]. Evolution,1991,45 (5):1229−1244. doi: 10.2307/2409730
[54] O'Meara BC,Smith SD,Armbruster WS,Harder LD,Hardy CR,et al. Non-equilibrium dynamics and floral trait interactions shape extant angiosperm diversity[J]. Proc Roy Soc B:Biol Sci,2016,283 (1830):20152304.
[55] Conner J,Via S. Patterns of phenotypic and genetic correlations among morphological and life-history traits in wild radish,Raphanus raphanistrum[J]. Evolution,1993,47 (2):704−711. doi: 10.2307/2410086
[56] Conner JK,Sterling A. Testing hypotheses of functional relationships:a comparative survey of correlation patterns among floral traits in five insect-pollinated plants[J]. Am J Bot,1995,82 (11):1399−1406.
[57] Yang CF,Guo YH. Pollen size-number trade-off and pollen-pistil relationships in Pedicularis (Orobanchaceae)[J]. Plant Syst Evol,2004,247 (3-4):177−185.
[58] Schluter D. Adaptive radiation along genetic lines of least resistance[J]. Evolution,1996,50 (5):1766−1774. doi: 10.2307/2410734
[59] Bolstad GH,Hansen TF,Pélabon C,Falahati-Anbaran M,Pérez-Barrales R,Armbruster WS. Genetic constraints predict evolutionary divergence in Dalechampia blossoms[J]. Philos Trans Roy Soc B:Biol Sci,2014,369 (1649):20130255. doi: 10.1098/rstb.2013.0255
[60] Opedal ØH,Armbruster WS,Hansen TF,Holstad A,Pélabon C,et al. Evolvability and trait function predict phenotypic divergence of plant populations[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2023,120 (1):e2203228120. doi: 10.1073/pnas.2203228120
[61] Lázaro A,Vignolo C,Santamaría L. Long corollas as nectar barriers in Lonicera implexa:interactions between corolla tube length and nectar volume[J]. Evol Ecol,2015,29 (3):419−435. doi: 10.1007/s10682-014-9736-5
[62] Torres C,Galetto L. Are nectar sugar composition and corolla tube length related to the diversity of insects that visit Asteraceae flowers?[J]. Plant Biol,2002,4 (3):360−366. doi: 10.1055/s-2002-32326
[63] Li HL. Evolution in the flowers of Pedicularis[J]. Evolution,1951,5 (2):158−164. doi: 10.2307/2405766
[64] Ree RH. Phylogeny and the evolution of floral diversity in Pedicularis (Orobanchaceae)[J]. Int J Plant Sci,2005,166 (4):595−613. doi: 10.1086/430191
[65] Huang SQ,Wang XP,Sun SG. Are long corolla tubes in Pedicularis driven by pollinator selection?[J]. J Integrat Plant Biol,2016,58 (8):698−700. doi: 10.1111/jipb.12460
[66] Huang SQ,Fenster CB. Absence of long-proboscid pollinators for long-corolla-tubed Himalayan Pedicularis species:implications for the evolution of corolla length[J]. Int J Plant Sci,2007,168 (3):325−331. doi: 10.1086/510209
[67] Wang XP,Huang SQ. Interspecific and intraspecific variation in corolla tube length in Pedicularis species achieved by both cell anisotropy and division[J]. J Syst Evol,2017,55 (3):208−214. doi: 10.1111/jse.12239
[68] Navarro L, Medel R. 2009. Relationship between floral tube length and nectar robbing in Duranta erecta L. (Verbenaceae)[J]. Biol J Linn Soc, 2029, 96(2): 392-398.
[69] Jogesh T,Overson RP,Raguso RA,Skogen KA. Herbivory as an important selective force in the evolution of floral traits and pollinator shifts[J]. AoB Plants,2017,9 (1):plw088.
[70] Galen C,Cuba J. Down the tube:pollinators,predators,and the evolution of flower shape in the alpine skypilot,Polemonium viscosum[J]. Evolution,2001,55 (10):1963−1971.
[71] Villarreal AG,Freeman CE. Effects of temperature and water stress on some floral nectar characteristics in Ipomopsis longiflora (Polemoniaceae) under controlled conditions[J]. Bot Gazette,1990,151 (1):5−9. doi: 10.1086/337797
[72] Koti S,Reddy KR,Reddy VR,Kakani VG,Zhao DL. Interactive effects of carbon dioxide,temperature,and ultraviolet-B radiation on soybean (Glycine max L. ) flower and pollen morphology,pollen production,germination,and tube lengths[J]. J Exp Bot,2005,56 (412):725−736. doi: 10.1093/jxb/eri044
[73] Barbir J,Dorado J,Fernández-Quintanilla C,Blanusa T,Maksimovic C,Badenes-Pérez FR. Wild rocket-effect of water deficit on growth,flowering,and attractiveness to pollinators[J]. Acta Agr Scand B-S P,2014,64 (6):482−492.
[74] Stark DSP. Anatomical and physiological studies of floral tube elongation of Crocus vernus (Iridaceae)[J]. Am J Bot,1982,69 (9):1476−1482. doi: 10.1002/j.1537-2197.1982.tb13396.x
[75] Tong ZY,Wang XP,Wu LY,Huang SQ. Nectar supplementation changes pollinator behaviour and pollination mode in Pedicularis dichotoma:implications for evolutionary transitions[J]. Ann Bot,2019,123 (2):373−380. doi: 10.1093/aob/mcy102
-
期刊类型引用(0)
其他类型引用(3)