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金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析

谢国芳, 徐小燕, 王瑞, 刘志刚, 周笑犁, 杨涵桃

谢国芳, 徐小燕, 王瑞, 刘志刚, 周笑犁, 杨涵桃. 金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析[J]. 植物科学学报, 2017, 35(1): 122-127. DOI: 10.11913/PSJ.2095-0837.2017.10122
引用本文: 谢国芳, 徐小燕, 王瑞, 刘志刚, 周笑犁, 杨涵桃. 金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析[J]. 植物科学学报, 2017, 35(1): 122-127. DOI: 10.11913/PSJ.2095-0837.2017.10122
Xie Guo-Fang, Xu Xiao-Yan, Wang Rui, Liu Zhi-Gang, Zhou Xiao-Li, Yang Han-Tao. Analysis of phenolic, Vc and antioxidant activity of fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi[J]. Plant Science Journal, 2017, 35(1): 122-127. DOI: 10.11913/PSJ.2095-0837.2017.10122
Citation: Xie Guo-Fang, Xu Xiao-Yan, Wang Rui, Liu Zhi-Gang, Zhou Xiao-Li, Yang Han-Tao. Analysis of phenolic, Vc and antioxidant activity of fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi[J]. Plant Science Journal, 2017, 35(1): 122-127. DOI: 10.11913/PSJ.2095-0837.2017.10122
谢国芳, 徐小燕, 王瑞, 刘志刚, 周笑犁, 杨涵桃. 金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析[J]. 植物科学学报, 2017, 35(1): 122-127. CSTR: 32231.14.PSJ.2095-0837.2017.10122
引用本文: 谢国芳, 徐小燕, 王瑞, 刘志刚, 周笑犁, 杨涵桃. 金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析[J]. 植物科学学报, 2017, 35(1): 122-127. CSTR: 32231.14.PSJ.2095-0837.2017.10122
Xie Guo-Fang, Xu Xiao-Yan, Wang Rui, Liu Zhi-Gang, Zhou Xiao-Li, Yang Han-Tao. Analysis of phenolic, Vc and antioxidant activity of fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi[J]. Plant Science Journal, 2017, 35(1): 122-127. CSTR: 32231.14.PSJ.2095-0837.2017.10122
Citation: Xie Guo-Fang, Xu Xiao-Yan, Wang Rui, Liu Zhi-Gang, Zhou Xiao-Li, Yang Han-Tao. Analysis of phenolic, Vc and antioxidant activity of fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi[J]. Plant Science Journal, 2017, 35(1): 122-127. CSTR: 32231.14.PSJ.2095-0837.2017.10122

金刺梨果实和叶中酚类、Vc含量及其抗氧化能力分析

基金项目: 

贵州省科技厅-贵阳市科技局-贵阳学院联合基金(黔科合LH字[2014]7179号);国家级大学生创新创业训练计划项目(201510976022);贵州省教育厅自然科学研究重点项目(黔教合KY字[2014]276);贵州省科技创新人才团队建设项目(黔科合人才团队(2013)4028)。

详细信息
    作者简介:

    谢国芳(1987-),男,副教授,硕士,研究方向为农产品贮藏与加工。

    通讯作者:

    谢国芳,E-mail:xieguofang616@sina.com

  • 中图分类号: Q946

Analysis of phenolic, Vc and antioxidant activity of fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi

Funds: 

This work was supported by grants from the Science and Technology Project of Department of Science and Technology of Guizhou Province (China) (LH[2014]7179), National Undergraduate Training Programs for Innovation and Entrepreneurship (201510976022), Natural Science Project of Department of Education of Guizhou Province (China) (KY[2014]276), and Scientific and Technological Innovation Team for Guizhou Fruit Processing and Storage, China ([2013]4028).

  • 摘要: 为了解贵州金刺梨(Rosa sterilis D.Shi)果实和叶片中的活性成分及其抗氧化活性,以贵州普定县金刺梨种植基地的果实和叶片为试材,测定其活性成分含量及其抗氧化活性,并对各项指标进行相关性分析。结果显示:没食子酸、芦丁、槲皮素、儿茶素、鞣花酸、绿原酸、阿魏酸是供试金刺梨果实和叶片的主要酚类成分,金刺梨果实和叶片中活性组分差异显著(P<0.05),果实中p-香豆酸、总黄酮和抗坏血酸的含量相对较高,而叶片中没食子酸、儿茶素、绿原酸、表儿茶素、阿魏酸、鞣花酸、芦丁、槲皮素和总酚含量均高于果实;金刺梨果实抗氧化活性值均显著高于叶片(P<0.05);相关性分析发现:总黄酮对总还原力(TRPA)值的贡献极强,抗坏血酸对Fe3+还原抗氧化能力(FRAP)值贡献最强,槲皮素对ABTS值的贡献最强,说明金刺梨果实和叶片是一种具有较高开发价值的药食同源资源。
    Abstract: The bioactive compounds and antioxidant activity of the fruits and leaves of Rosa sterilis D. Shi in Guizhou province were analyzed using correlation analysis. The results indicated that gallic acid, rutin, quercetin, catechin, ellagic acid, chlorogenic acid, and ferulic acid were the major phenolic compounds in the fruits and leaves. The contents of bioactive compounds were significantly different between the fruit and leaves (P<0.05). The contents of p-coumaric acid, polyphenols and flavonoids were the highest in the fruit. However, the contents of gallic acid, catechin, chlorogenic acid, epicatechin, ferulic acid, ellagic acid, rutin, quercetin and polyphenols were higher in the leaves. The antioxidant activities of fruit were significantly higher than that of the leaves (P<0.05), flavonoids had a strong contribution to the total reducing power assay (TRPA) value, ascorbic acid had a strong contribution to the ferric ion reducing antioxidant power (FRAP) value, and quercetin had a strong contribution to the ABTS value. The fruits and leaves of R. sterilis D. Shi are of high value for the development of medicinal and edible resources.
  • 彩叶植物具有丰富多彩的叶色,可形成多样化景观,弥补热带地区常绿植物叶色和园林景观的单一缺陷[1, 2]。近年来,彩色植物在城市绿地中的比例逐步增加,有望达到15%~20%[3],在生态性能、种植管理和绿化应用等领域发挥重要作用[4],但彩叶植物对外界环境要求较高,且当地乡土树种资源利用不充分,导致其发展与应用较为缓慢。目前,彩叶植物的研究主要集中在植物色素的种类和含量变化、叶片组织结构以及光合特性等方面[5, 6],叶色变化是由内部调控机制和外界环境共同作用的结果,形成机制较为复杂,植物色素是彩叶植物叶片呈色的物质基础,通过不同植物色素的种类、含量以及分布比例形成了丰富多彩的叶色表型[7, 8],且不同品种、不同叶位和叶龄间的彩叶植物的叶色也存在差异。

    白果蒲桃(Syzygium album Q. F. Zheng)隶属于桃金娘科蒲桃属(Syzygium),是福建省重点保护野生植物,为1990年发表在《福建植物志》第4卷上蒲桃属的新种[9, 10]。通过近年来的观察记录,发现白果蒲桃树龄长、树形丰满、叶型优美、叶色多变,在自然生长状态下叶色变化主要发生在春季和秋季,春梢顶生新芽,侧枝不长叶,叶色变化为水黄色、浅黄绿色、浅绿色;秋梢新芽顶生或腋生,叶色变化为胭脂红色、赭红色、黄绿色、墨绿色等,具有较高观赏价值,是一种具有较大的发展前景与研究价值的特色乡土彩叶树种。目前对白果蒲桃的研究主要集中于种群结构[11]、生态环境[12, 13]及种苗繁殖[14-16]等方面,并未对其叶色变化等观赏特性开展研究。为了揭示白果蒲桃的叶色表现差异性和呈色机理,本研究以白果蒲桃不同叶位的叶片为研究对象,通过RHSCC(Royal horticultural society color chart)色彩测定和色差参数对叶片色彩进行分析,以及测定其叶液的pH值和EC值、可溶性糖含量、相关的色素含量并分析其比例差异,利用数学色彩模型及相关性分析等统计学方法,探讨叶色表型与色差参数以及呈色生理因子之间的相关性,以期为彩叶树种的色差参数评价和呈色机理分析提供理论依据,并为特色彩叶乡土树种的开发和利用提供参考和借鉴。

    植物材料来源于福建省林业科技试验中心白果蒲桃种苗试验圃,地处漳州市南靖县(24°30′49″N,117°19′12″E,海拔90 m),地面温度年均值24.9 ℃,年平均水量1 821.1 mm,为亚热带海洋性季风气候。生长环境地势开阔、土质肥沃疏松、排水良好、光照充足。

    选取试验圃中的白果蒲桃扦插苗为实验材料。于2023年1月选取10株处于同一生长期、生长健壮、叶色表现均一的植株进行表型差异观测和采样。按照4个不同叶位(Y1~Y4)分别混合取样(图1),并分为两组用于测定生理指标,一组为新鲜样品,另一组置于电热鼓风干燥箱中在55 ℃下进行杀青干燥,用植物组织破壁机粉碎备用。

    图  1  白果蒲桃不同叶位示意图
    Figure  1.  Schematic of different leaf positions of Syzygium album

    采用英国皇家园艺学会比色卡RHSCC和色差仪(NH310,三恩时)对不同叶位(Y1~Y4)的新鲜植物叶片的叶色表型进行测定分析,选取10株,每株每个叶位做3次生物学重复。通过色差仪分别采集RGB色彩和Lab颜色模式。根据Matlab RGB软件转化获取色值HEX实色效果;根据Lab模式采集叶片的明度参数L*以及色相参数a*、b*并根据C*= (a2+b2)1/2计算彩度值C*,对其叶片表型色差参数进行数据量化[17]

    取新鲜植株叶片1 g,加入0.1 g石英砂后在液氮条件下充分研磨后转移至15 mL的离心管中,定容至10 mL。定容后的溶液4 ℃,1 200 r/min离心2 min后,取其上清液。采用台式pH计和电导率仪(FE30K-PLUS,梅特勒托利多)测定其pH值和EC值。每个叶位做3个重复,取其平均值。

    取新鲜的白果蒲桃叶片,用打孔器避开叶脉取叶面积为3 cm2的叶片[18],加入10 mL混合提取液(丙酮 : 乙醇 : 蒸馏水 = 4.5 : 4.5 : 1)[19],在黑暗环境下浸提24 h,至叶片发白。使用紫外分光光度计(UV1780,SHIMADZU),分别在665、642、474 nm处测定溶液吸光度,并计算其叶绿素a(Chla)、叶绿素b(Chlb)、总叶绿素(Chl)、叶绿素a/b(Chla/b)及类胡萝卜素(Car)的含量,每个叶位做3个重复,取其平均值。

    将白果蒲桃叶片烘干至恒重,粉碎,过30~50目筛后,称取0.1 g采用Solarbio植物类黄酮(Fla)、花青素和可溶性糖含量检测试剂盒进行测定。根据标准品浓度及其吸光度(OD值)使用ELISA Calc回归拟合计算程序拟合曲线回归方程(R2≥0.98),并根据拟合曲线计算实验样本的物质含量。

    本研究使用Excel 2021软件对所有数据进行统计整理。各生理指标相关数据采用DPS 7.05软件进行单因素方差分析(One-Way ANOVA)和LSD多重比较方法分析,数据以平均值±标准误表示。使用Origin 2021软件作图。

    本研究发现,白果蒲桃在同一时期不同叶位上呈现出显著的叶色差异(图2),其叶色主要分为4种:Y1为紫红色(RHS2015-58A,Strong purplish red),位于枝干最前梢;Y2为深绿黄色(RHS2015-152D,Dark greenish yellow),位于枝干中上部;Y3为亮黄绿色(RHS2015-149A,Brilliant yellow green),位于枝干中部;Y4为深黄绿色(RHS2015-139A,Dark yellowish green),位于枝干下端。即白果蒲桃不同叶位从上到下(Y1至Y4),叶片红色消退,逐渐过渡为黄绿色和绿色。

    图  2  白果蒲桃不同叶位的叶色表型差异
    Figure  2.  Phenotypic differences in leaf color at different leaf positions of Syzygium album

    白果蒲桃的不同叶色表型的明度值L*、红/绿度值a*、黄/蓝度b*及彩度值C*如图3所示。由图3可知,白果蒲桃叶色差异显著,Y1和Y2叶片a*值为正(+),颜色偏红,Y1叶色红度(+a*)显著最高;Y3和Y4叶片a*值为负(−),颜色偏绿,Y2、Y3和Y4叶片的b*值为正(+),颜色偏黄;Y3的黄度(+b*)、色泽亮度L*和纯度C*皆显著较高。综合以上分析结果发现:当a*值变为负值时,叶片由红色向绿色过渡,b*值变为正值时,叶片由红色向黄绿色过渡,从Y1到Y4,b*值先升高,后降低。Y1表现为显著偏红叶色;Y2表现为“红-黄-绿”混合叶色;Y3和Y4表现为不同程度的黄绿叶色,Y3的黄度(+b*)和亮度(L*)高于Y4,而Y4的绿度(-a*)高于Y3,即Y3为亮黄绿色,Y4深黄绿色。这与RHSCC的表型观测一致。

    图  3  不同叶色表型的颜色参数
    a~c表示不同样本间差异显著(P<0.05)。下同。L*值:正数表示偏亮,负数表示偏暗;a*值:正数表示偏红,负数表示偏绿;b*值:正数表示偏黄,负数表示偏蓝[20, 21]
    Figure  3.  Color parameters of different leaf color phenotypes
    a-c indicate significant differences in different samples (P<0.05). Same below. L* value: Positive number means brighter, negative number means darker; a* value: Positive number means redder, negative number means greener; b* value: Positive number means yellower, negative number means bluer [20, 21].

    表1可知,白果蒲桃不同叶色表型之间的叶液pH值、电导率(EC值)和可溶性糖(SSC)含量有显著性差异。4种叶色的叶液pH值均低于5.0,呈弱酸性;Y4的叶液pH值显著较高,Y1和Y2的叶液pH值差异并不显著。Y1的EC值显著高于Y2、Y3和Y4,由Y1到Y4,叶液pH值逐渐升高,EC值逐渐下降。Y4的可溶性糖的含量显著较高,而Y1、Y2和Y3之间的可溶性糖含量差异并不显著。

    表  1  不同叶色表型的叶液pH值、EC值和可溶性糖含量
    Table  1.  Leaf sap pH, EC, and soluble sugar content for different leaf color phenotypes
    样品
    Sample
    pH值
    pH value
    电导率
    Electric conductivity / µS/cm
    可溶性糖含量
    Soluble sugar content / mg/g
    Y1 3.29±0.02c 1288.68±17.40a 2.45±0.18b
    Y2 3.47±0.16c 1120.67±1.76b 2.93±0.11b
    Y3 3.88±0.07b 981.00±13.45c 2.43±0.16b
    Y4 4.83±0.08a 544.33±6.12d 4.06±0.35a
    注:Y1、Y2、Y3和Y4表示不同叶位的白果蒲桃叶片。同列不同小写字母表示不同叶位间差异显著(P<0.05)。下同。
    Notes: Y1, Y2, Y3 and Y4 represent leaf of Syzygium album with different leaf positions. Different lowercase letters indicate significant (P<0.05) differences between different leaf positions. Same below.
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    白果蒲桃叶片的色素组成及含量变化如图4所示,在同一生长阶段,不同叶色的色素含量差异显著。Y4叶片中的Chla、Chlb、Chl、Car和Fla含量均显著最高,其中Chla、Fla含量差异显著,即Y4>Y3>Y2>Y1;Y1、Y2和Y3 3种叶片的Chlb和Car含量差异不显著,Y2和Y3的总Chl含量差异不显著。4种叶片中花青素(OPC)的含量差异显著,即Y2>Y1>Y4>Y3,表明白果蒲桃的叶色表型与色素组分和含量密切相关。

    图  4  不同叶色的色素成分及含量变化
    Figure  4.  Changes in pigment composition and content for different leaf colors

    单向地比较和分析植物色素的组分和含量,很难全面地解释叶色表型差异和呈色因子,因此本研究通过色素均值来计算各植物色素组分之间的比值差异系数(表2),分析各色素组分之间的相对占比情况。由表2可知:(1)Y1、Y2和Y3的Chla/b系数均大于1,说明Y1、Y2、Y3的Chla占比大于Chlb,Chla为叶绿素的主要组分;(2)Y2和Y3的Fla/Chl系数大于1,说明在Y2和Y3中其类黄酮的相对含量高于总叶绿素,使其叶色表型呈现偏黄的绿色;(3)Y1和Y2的OPC/Chl和OPC/Fla系数均大于1,接近2,说明在Y1和Y2的色素组分中,花青素为主要色素,是叶片颜色呈红色和偏红色的原因。叶绿素之间以及总叶绿素与各植物色素之间的比值系数差异形成了不同的叶色表型。

    表  2  不同叶色表型的色素比值系数
    Table  2.  Pigment ratio coefficients of different leaf color phenotypes
    样品Sample Y1 Y2 Y3 Y4
    叶绿素a/b 1.03 1.58 2.01 0.73
    类胡萝卜素/叶绿素 0.19 0.22 0.31 0.34
    类黄酮/叶绿素 0.75 1.12 1.72 0.49
    花青素/叶绿素 2.11 1.91 0.20 0.09
    花青素/类黄酮 2.81 1.71 0.12 0.18
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    图5中色差参数与各指标的相关性分析可知,白果蒲桃的色泽亮度L*值与黄/蓝度b*值和彩度C*值均呈极显著正相关,与可溶性糖含量为显著负相关;红/绿度a*值与EC值和花青素含量呈极显著正相关,与黄/蓝度b*值、叶液pH值和叶绿素、类胡萝卜素、类黄酮的含量呈极显著负相关;颜色彩度C*值与可溶性糖含量为极显著负相关。叶液pH值与叶绿素、类胡萝卜素、类黄酮的含量为极显著正相关,与EC值为极显著负相关;类黄酮含量与叶绿素和类胡萝卜素含量呈极显著正相关。

    图  5  色差参数与各生理指标的相关性分析
    *:P≤0.05,**:P≤0.01,下同。红色表示正相关(+),蓝色表示负相关(−);L*:明亮度;a*:红/绿度;b*:黄/蓝度;C*:颜色纯度;SSC:可溶性糖;Chla:叶绿素a;Chlb:叶绿素b;Chl:总叶绿素;Car:类胡萝卜素;OPC:花青素;Fla:类黄酮。下同。
    Figure  5.  Correlation analysis of color difference parameters with each physiological index
    Red indicates positive correlation (+), blue indicates negative correlation (-). L*: Bright; a*: Red/Green; b*: Yellow/Blue; C*: Color purity; SSC: Soluble sugar; Chla: Chlorophyll a; Chlb: Chlorophyll b; Chl: Total chlorophyll; Car: Carotenoid; OPC: Anthocyanin; Fla: Flavonoid. Same below.

    通过叶片色差参数与色素比值系数相关性分析可以更加全面地了解叶片呈色因子及各色素组分之间的分布差异(图6)。本研究发现,叶片色泽亮度L*值与Chla/b和Fla/Chl的比值系数呈极显著正相关;红/绿度值a*与OPC/Fla比值系数呈极显著正相关;Car/Chl与OPC/Chl比值系数之间为极显著负相关。结合色差参数和色素比值差异分析可知,若Fla/Chl系数大于1,颜色偏黄(+b*);若OPC/Chl和OPC/Fla系数大于1,则颜色偏红(+a*)。

    图  6  色差参数与色素比值系数的相关性分析
    Figure  6.  Correlation analysis of color difference parameters and pigment ratio coefficients

    彩叶植物的叶色表现是由内部调控机制和外界环境共同作用的结果,形成机制较为复杂[22]。近几年关于叶色转换机制的研究主要探讨了叶色变化与各种色素含量变化之间的关系以及与色素合成相关的候选基因[23, 24],但对于不同植物色素组分之间的比例分布与色差参数的相关性还需进一步研究。研究发现,植物色素是影响植物叶片呈色的主要因素,包括叶绿素、类胡萝卜素和类黄酮类等色素[25],叶绿素主要包含Chla和Chlb,是叶片呈绿色的主要色素;类胡萝卜素与叶绿素共同反应,使之呈黄色至橘黄色;类黄酮类色素主要包含花青素、花色苷、黄酮醇等色素,使叶片表现为红色至蓝色,而花青素是叶片呈红色至紫色的主要色素[26]。植物叶色差异的直接原因是叶片中色素的种类和比例发生了变化,花青素直接影响叶片颜色,其他植物色素也会通过辅助素效应影响叶片颜色[27,28]。本研究通过对不同植物色素间的比例分布与色差参数的相关性分析,发现呈色取决于花青素与叶绿素、类黄酮的比值系数及差异。当白果蒲桃的类黄酮/叶绿素比值系数大于1,则叶片颜色偏黄(+b*);当花青素/叶绿素和花青素/类黄酮的系数大于1,则颜色偏红(+a*),花青素为主要色素,这也是叶片颜色呈红色和偏红色的原因。李玲[29]通过对比红枫(Acer palmatum ‘Atropurpureum’)、紫叶李(Prunus ceraifera ‘Atropurpurea’)、紫叶小檗(Berberis thunbergii ‘Atropurpurea’)、紫叶桃(Prunus persica ‘Ziye’)、王族海棠(Malus ‘Royalty’)等5种红叶植物,发现色素比例决定叶片颜色,当叶片中的花青素与叶绿素的比值大于2时,花青素的主导作用效果显著,叶绿素互补效应较弱,使叶片呈现红色。刘平等[30]的研究发现,当美国红枫(Acer×freemanii‘Autumn Blaze’)和元宝枫(Acer truncatum Bunge)的花青素/叶绿素比值系数大于2.5时,花青素占主导,呈红色。这与本研究的实验结果一致,植物叶片呈色差异不是某一色素含量变化所致,而是色素含量和比例变化对其叶色表型的综合效果,色素的含量变化和比值差异会直接影响叶片呈色表型[31, 32],增加了叶色变化的多样性[33]。综上所述,色素的比值系数可为叶片呈色与表型描述提供一个更加量化的参考指标。

    研究表明,通过植物色差仪可将叶片颜色进行定量化测量,使色彩度和色差度数据化,降低个人视觉感官带来的误差[34, 35]。植物的色彩度具有重叠性,不同组分色素之间由于不同的比例系数变化,呈现不同的叶色表型。刘易超等[36]通过对中华金叶榆(Ulmus pumila ‘ZhonghuaJinye’)叶片色彩值及色素含量分析发现,叶绿素b对色彩值的L*、b*的影响较小,叶绿素a和类胡萝卜素是引起叶片颜色的变化的主要因素。王改萍等[37]发现在金叶银杏(Ginkgo biloba L.)中Chla和Chlb均与色差参数L*、a*、b*和C*呈负相关,Car与色差参数a*呈显著正相关,与b*呈极显著正相关。本研究与前人的研究结果一致,叶片的色差参数与色素的种类和组分密切相关,而其他相关生理指标则是通过影响植物色素的形成与积累,间接影响叶片呈色表型和叶色差异的。安然等[20]的研究发现,北美栎树(Quercus spp.)中可溶性糖积累有利于花青素的合成,与花青素含量显著相关,贾庆彬等[38]在对拧筋槭(Acer triflorum Komarov)的3种叶色分析中发现,花青素与Chlb、pH值和EC值存在显著正相关,这表明可溶性糖的积累、pH值和EC值的变化是通过影响花青素和叶绿素组分的积累,间接参与叶色变化。在白果蒲桃叶色形成与呈色差异的过程中,叶色参数、植物色素以及相关间接生理因子之间存在一定的耦合相关性,是相互作用影响的。通过对其相关性的分析,了解表型性状与生理特性间的相互关系与关联程度,对探究性状间的互作效应、特定性状的选择等具有重要作用,也为今后彩叶树种的选育和观赏性状的评价提供参考与借鉴。

    综合叶片色差和色素组分差异分析可知,白果蒲桃不同叶位的叶片呈现显著的颜色差异,叶位从上到下,由红色到黄绿色再到绿色,叶色红度逐渐下降,绿度和黄度逐渐升高。结合叶片RHSCC色彩测定,表明使用植物色差仪进行叶色表型观测方法可行,不仅可以如实反映表型颜色状态,还可以定量数据化表征颜色与色泽在三维空间中的表现,进行精准量化评估,降低个人感官的误差。

    不同叶色表型与其色素组分以及各色素之间的比值系数密切相关。叶片的呈色与色差变化也并不是由某一种色素单独所决定,而是色素组分、含量和比例变化对其叶色表型综合反映的结果。白果蒲桃不同叶色表型的呈色差异主要取决于花青素与叶绿素、类黄酮等植物色素组分之间的相对占比和分布。

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出版历程
  • 收稿日期:  2016-05-29
  • 网络出版日期:  2022-10-31
  • 发布日期:  2017-02-27

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