Ultrastructural and cytochemical studies on spore development in Dryopteris erythrosora (Eaton) O. Ktze.
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摘要: 采用透射电镜和细胞化学技术对红盖鳞毛蕨（Dryopteris erythrosora（Eaton）O.Ktze.）的孢子发育过程进行了研究，根据超微结构和细胞化学特征可将其孢子发育过程分为3个阶段：（1）孢子母细胞及其减数分裂阶段：孢子母细胞壳在孢原细胞末期开始形成，位于孢子母细胞及其减数分裂形成的四分体外侧，PAS反应显示其为多糖性质，与胼胝质壁为同功结构；在减数分裂形成的四分孢子之间产生孢子外壳，从功能、形成位置和时间上看与胼胝质壁相似，但苏丹黑B反应显示其可能含有脂类物质，与孢子母细胞壳和胼胝质壁不同。（2）孢子外壁形成阶段：外壁为乌毛蕨型（Blechnoidal-type），由薄的多糖性质的外壁内层和表面平滑的孢粉素外壁外层构成；小球参与外壁外层的形成，组织化学分析显示小球的中央区域和外壁外层内侧部分由红色（多糖）变为黄色，小球的表面区域和外壁外层部分始终被染成黑色（脂类），可知小球与外壁同步发育。（3）孢子周壁形成阶段：周壁为凹陷型（Cavate-type），包括2层，内层薄，紧贴外壁，外层隆起形成孢子脊状褶皱纹饰的轮廓，以少见的向心方向发育；苏丹黑B和PAS反应观察周壁被染成橙色，推测其可能由多糖等成分构成；孢子囊壁细胞参与周壁的形成。本研究为揭示蕨类植物孢子发生的细胞学机制提供了新资料。Abstract: Spore development of Dryopteris erythrosora(Eaton) O. Ktze. was studied by transmission electron microscopy and cytochemical technology. Based on ultrastructural and cytochemical features, spore development was divided into three stages. (1) Spore mother cell and meiosis stage:sporocyte coat is formed at the late stage of the archesporial cells. The sporocyte coat covers the spore mother cells and the outer surface of the tetrads. The PAS reaction shows that this coat is polysaccharide in nature. It is an analogous structure with callose. During meiosis, spore coats are formed between the tetrad spores. The spore coats resemble the callose wall in function, formation site, and formation time. However, Sudan Black B staining shows that the spore coats may contain lipid material, which does not exist in the callose wall. (2) Exospore formation stage:exospore formation is Blechnoidal-type. The exospore consists of two layers, i.e. thin inner exospore and thick outer exospore. The former is composed of polysaccharides and the latter is composed of sporopollenin with a smooth outer surface. Globules participate in the formation of the outer exospore. Cytochemical staining shows that the center of the globules and inner part of the outer layer of the exospore are yellow, but the outer part of the globules and outer layer of the exospore became black when stained (probably containing lipids). It can be inferred that the globules and exospore develop simultaneously. (3) Perispore formation stage:perispore formation is Cavete-type. The perispore consists of an inner perispore and outer perispore. The thin inner perispore appresses the exospore closely. The outer perispore projects outwards and forms the outline of the ridge ornamentation of the spore. The development of the perispore is centripetal. Sudan Black and PAS reaction stain the perispore orange, indicating that the perispore may be composed of several polysaccharides. Spore wall cells participate in formation of the perispore. The present investigation provides new data for sporogenesis and spore wall development, which will contribute to revealing the cytological mechanism of sporogenesis.
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Keywords:
- Dryopteris erythrosora /
- Spore development /
- Ultrastructural /
- Cytochemistry
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洋紫荆（Bauhinia variegata L.），又名宫粉紫荆，为豆科羊蹄甲属落叶乔木，有“南国樱花”之美誉，具有极高的观赏价值，同时也是优质蜜源植物，其花芽、嫩叶和幼果可食，药用价值高[1]。研究表明，洋紫荆所有花色花瓣均不含类胡萝卜素和叶绿素，而含有黄酮类化合物[2]。白色花的总黄酮含量最低，红色花的类黄酮含量最高；类黄酮、花青素含量分别在紫色系、红色系中随着花色加深而增加，且差异显著；白花洋紫荆无花青素存在，表明花青素是洋紫荆花色呈现红色的主要因素[2]。Zhang等[3]的研究表明，洋紫荆花中有46种花青素，其中27种在白花和红花之间存在差异，Malvidin 3-O-galactoside、Peonidin 3-O-galactoside等被认为是洋紫荆花瓣呈红色的原因。
花青素是广泛存在于植物中的一种水溶性色素，有一定的抗氧化能力，其合成后会进行分子修饰形成稳定的物质，其修饰类型包括糖基化、酰基化和甲基化等[4-6]。花色素安全无毒，可作为食品添加剂用于食品着色，在营养保健、防治心血管疾病、抗癌、延缓衰老等方面具有较高的开发价值[7-9]。黄酮能有效地清除体内的氧自由基，是一种很强的抗氧剂[10, 11]。目前，对洋紫荆的研究一般集中在树种特征[12]、种质资源收集[13]、繁育[14]、城市绿化应用[1]及其化学成分研究[15]等方面。洋紫荆最重要的观赏性状是花色，前人仅开展了洋紫荆花瓣中类黄酮、花青素总含量的测定，或白花和红花花青素含量的测定，有关白色、粉红色和紫红色花的花青素、类黄酮物质的组成与含量的差异尚未见报道。本研究采用超高效液相色谱串联质谱（LC-MS/MS）方法，对不同花色洋紫荆花瓣中花青素和类黄酮的组成和含量进行分析，以期为洋紫荆花色形成的机理研究提供基础。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
以白色、粉红色、紫红色等3种花色的洋紫荆为实验材料（图1），材料均种植于广州增城林木良种繁育基地，树龄均在10年以上。于2021年3月，每种花色的洋紫荆各随机选取3个单株，白色花瓣的植株编号为BH1~BH3，粉红色为FH1~FH3，紫红色为ZH1~ZH3。每个单株分上、中、下3层随机选取花瓣，混合后置于液氮中带回备用。
1.2 试剂
花青素样品制备及代谢物提取采用的甲醇（Merck，德国）和甲酸（Sigma-Aldrich）为色谱纯，盐酸（信阳市化学试剂厂）为优级纯。矢车菊素-3,5-O-二葡萄糖苷、矢车菊素-3-O-（6-O-丙二酰-β-D-葡萄糖苷）、矢车菊素-3-O-阿拉伯糖苷、矢车菊素-3-O-半乳糖苷和矢车菊素-3-O-葡萄糖苷等标准品购自法国ExtraSynthese公司[16]。
类黄酮样品制备及代谢物提取采用的甲醇（Merck，德国）和乙腈（Merck，德国）均为色谱纯。4-烯丙基儿茶酚、3,4-二羟基苯甲酸、原儿茶酸、5,7-二羟基色酮、白杨素、异甘草素、7-羟基-4'-甲氧基黄烷等标准品均购自BioBioPha/Sigma-Aldrich公司[17]。
1.3 样品制备及代谢物提取
花青素样品制备及代谢物提取：将花瓣放置于冻干机（Scientz-100F，宁波）中真空冷冻干燥。利用研磨仪（MM 400，Retsch，德国）研磨（30 Hz，1.5 min）至粉末状，称取50 mg粉末，溶解于500 μL提取液（50%甲醇水溶液，含0.1%盐酸）中。将溶液涡旋5 min，超声5 min，离心（12000 r/min，3 min），吸取上清，重复操作1次；合并两次上清液，用微孔滤膜（0.22 μm）过滤样品，并保存于进样瓶中[18]。
黄酮类化合物样品制备及代谢物提取：将花瓣放置于冻干机中真空冷冻干燥；利用研磨仪研磨（30 Hz，1.5 min）至粉末状。称取100 mg粉末，溶解于1.2 mL 70%甲醇提取液中[18]。每30 min涡旋一次，每次持续30 s，共涡旋6次，然后样本置于4 ℃冰箱过夜。次日离心（12000 r/min，10 min）后，吸取上清，用微孔滤膜（0.22 μm）过滤样品，并保存于进样瓶中[17]。
1.4 超高效液相色谱串联质谱（LC-MS/MS）
花青素检测数据采集仪器系统的液相条件为：（1）色谱柱：ACQUITY BEH C18 1.7 µm，2.1 mm×100 mm；（2）洗脱梯度：0.00 min B相比例为5%，6.00 min增至50%，12.00 min增至95%，保持2 min，14 min降至5%，并平衡2 min；（3）流动相：A相为超纯水（含0.1%的甲酸），B相为甲醇（含0.1%的甲酸）[19]；（4）流速0.35 mL/min；柱温40 ℃；进样量2 μL。
质谱条件主要包括：电喷雾离子源（Electrospray ionization，ESI）温度550 ℃，正离子模式下质谱电压 5 500 V，气帘气（Curtain gas，CUR）35 psi[16]。在Q-Trap 6500 + 中，每个离子对根据优化的去簇电压（Declustering potential，DP）和碰撞能（Collision energy，CE）进行扫描检测。
黄酮类化合物检测数据采集仪器系统液相条件主要包括：（1）色谱柱：Agilent SB-C18 1.8 µm，2.1 mm×100 mm[20]；（2）洗脱梯度：0.00 min B相比例为5%，9.00 min内B相比例线性增加到95%，并在95% 维持1 min，10.00~11.10 min，B相比例降为5%，并以5%平衡至14 min[21]；（3）流动相：A相为超纯水（加入0.1%的甲酸），B相为乙腈（加入0.1%的甲酸）[20]；（4）流速0.35 mL/min；柱温40 ℃；进样量4 μL[21]。质谱条件主要包括：LIT和三重四极杆（QQQ）扫描[20]。
1.5 统计分析
利用Analyst 1.6.3软件处理质谱数据。以混合标准溶液作为质控样本，每隔10个检测样本插入1个质控样本，通过对同一质控样本的总离子流色谱图（TIC）进行重叠展示分析，判断仪器的稳定性[22]。
通过配制不同浓度的标准品溶液，获取各浓度对应的质谱峰强度数据，绘制不同物质的标准曲线，进行差异代谢物的筛选[16]。
2. 结果与分析
2.1 洋紫荆花瓣中花青素与黄酮类化合物的组成
本研究发现，洋紫荆花瓣中花青素、类黄酮样本质控总离子流色谱图的重叠性较高，保留时间和峰强度均一致（附图1、2
1 ），表明检测期间仪器稳定性较好，数据可信。利用本方法，最终从洋紫荆花瓣样本中检测到53种花青素代谢物，主要包括锦葵色素-3-O-葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-半乳糖苷、芍药花色素-3-O-葡萄糖苷等。此外，共鉴定出340种黄酮类化合物，主要成分为芍药花素-3-O-葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-（6''-O-丙二酰）葡萄糖苷、5,6,7,5′-四甲氧基-3′,4′-亚甲二氧基黄酮、5,7-二羟基色酮、异杞柳苷（根皮苷查尔酮）、原花青素B3等。2.2 不同花色洋紫荆花青素、类黄酮的成分及含量
对花青素不同成分的含量进行分析，并使用R程序脚本绘制聚类热图，颜色越红表示含量越高。分析结果显示，不同花色洋紫荆间差异明显。紫红色花中的锦葵色素-3-O-半乳糖苷、锦葵色素-3-O-葡萄糖苷、飞燕草素-3-O-半乳糖苷等含量较高；粉红色花中的飞燕草素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-槐糖苷、矮牵牛素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-桑布双糖苷-5-葡萄糖苷等含量较高；而洋紫荆白色花中的天竺葵素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷等含量较高（图2）。此外，白色花中几乎不含天竺葵素-3-O-桑布双糖苷、天竺葵素-3-O-槐糖苷、飞燕草素-3-O-桑布双糖苷等。而紫红色花中几乎不含飞燕草素-3-O-槐糖苷。
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图 2 不同花色洋紫荆花青素成分的含量聚类图Figure 2. Cluster analysis heatmap of anthocyanins in Bauhinia variegata petals对洋紫荆类黄酮成分的含量数据进行聚类，结果表明，3种花色中，粉红色花中的芍药花素-3-O-葡萄糖苷、芍药花素-3,5-O-二葡萄糖苷、金圣草黄素-7-O-芸香糖苷-5-O-葡萄糖苷、异牡荆素-7-O-（6''-芥子酰）葡萄糖苷等含量较高（图3）。
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图 3 不同花色洋紫荆类黄酮成分的含量聚类图Figure 3. Cluster analysis heatmap of flavonoids in Bauhinia variegata petals2.3 不同花色洋紫荆差异代谢物筛选及KEGG通路分析
2.3.1 不同花色洋紫荆差异代谢物筛选
对各组花青素差异代谢物的数目进行统计，发现FH vs ZH组的花青素差异代谢物最多，为36种，BH vs ZH组的差异代谢物有16种，BH vs FH组的差异代谢物有13种（表1）。对类黄酮物质差异代谢物的数目进行统计，发现BH vs ZH组的差异代谢物最多，为116种，FH vs ZH组的差异代谢物有112种，而BH vs FH组的差异代谢物为87种（表2）。
表 1 不同花色洋紫荆花青素差异代谢物数目统计Table 1. Statistics of differential anthocyanin metabolites between groups对比组
Group差异代谢物数目
Number of differential metabolites下调代谢物
Down-regulated metabolites上调代谢物
Up-regulated metabolitesBH vs FH 13 1 12 BH vs ZH 16 3 13 FH vs ZH 36 5 31 表 2 不同花色洋紫荆类黄酮物质差异代谢物数目统计Table 2. Statistics of differential flavonoid metabolites between groups对比组
Group差异代谢物数目
Number of differential metabolites下调代谢物
Down-regulated metabolites上调代谢物
Up-regulated metabolitesBH vs FH 87 50 37 BH vs ZH 116 86 30 FH vs ZH 112 67 45 2.3.2 差异代谢物KEGG通路
对不同对比组的花青素差异代谢物进行注释，结果表明，BH vs FH组在植物代谢、次生物代谢及花青素合成途径注释的代谢物分别为1、1和8个，分别占被注释代谢物总数的12.5%、12.5%和100%；BH vs ZH组在植物代谢、次生物代谢及花青素合成途径注释的代谢物数目分别为1、1、9个，分别占被注释代谢物总数的10%、10%、90%。
不同对比组筛选的花青素差异代谢物映射到3条通路，即花青素合成（ko00942）、植物代谢（ko01100）和次生代谢合成（ko01110）。代谢通路共映射18种物质，包括矮牵牛素-3-O-葡萄糖、飞燕草素-3-O-丙二酰葡萄糖苷、飞燕草素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷等。其中花青素合成通路的差异代谢物最多，共有18 种。而天竺葵素-3-O-葡萄糖苷参与了3 条代谢通路。
对不同对比组的类黄酮差异代谢物进行注释，结果表明，BH vs FH组在植物代谢、 类黄酮合成、黄酮和黄酮醇的生物合成、次生代谢物以及花青素合成途径注释的代谢物数目分别为2、7、4、8、7，分别占被注释代谢物总数的10.53%、36.84%、21.05%、42.11%、36.84%。BH vs ZH组在植物代谢、类黄酮合成、黄酮和黄酮醇生物合成、次生代谢物合成以及花青素合成途径注释的代谢物数目分别为2、4、6、6、7，分别占被注释代谢物总数的11.11%、22.22%、33.33%、33.33%、38.89%。
不同对比组筛选的类黄酮差异代谢物映射到6条通路，分别为花青素合成（ko00941）、花青素合成（ko00942）、花青素合成（ko00943）、花青素合成（ko00944）、植物代谢（ko01100）、次生代谢合成（ko01110）。代谢通路共映射60种物质，包括白杨素、橙皮素-7-O-葡萄糖苷、短叶松素、高良姜素、异杞柳苷 （根皮苷查尔酮）、柚皮素-7-O-葡萄糖苷 （樱桃苷）、柚皮素-7-O-新橙皮糖苷（柚皮苷）、紫铆素、紫铆因、柚皮素、芹菜素-8-C-葡萄糖苷 （牡荆素）、槲皮素等。以花青素合成（ko00941）通路的差异代谢物最多，共有27种物质。其中，柚皮素参与了花青素合成（ko00941）、花青素合成（ko00943），植物代谢（ko01100）、次生代谢合成（ko01110）等4 条代谢通路；而槲皮素、木犀草素、山奈酚参与了花青素合成（ko00941）、花青素合成（ko00944）、植物代谢（ko01100）、次生代谢合成（ko01110）等4条代谢通路。
3. 讨论
植物花色的形成受色素组成及含量、细胞pH值、花瓣表皮细胞性状等多种因素影响[23]。洋紫荆花色多样，主要有白色、粉红色和紫红色。本研究从洋紫荆中鉴定出53种花青素代谢物和340种黄酮类化合物，发现不同颜色洋紫荆花瓣中的花青素差异较大，这与Zhang等[3]的研究结果有所不同，该研究只检测到46种花青素，这可能是其只采集了白色和紫红色花瓣，未采集粉红色花瓣所导致。本研究发现不同颜色洋紫荆花瓣中的花青素差异较大，紫红色花中的锦葵色素-3-O-半乳糖苷、锦葵色素-3-O-葡萄糖苷、飞燕草素-3-O-半乳糖苷等含量较高，粉红色花中的飞燕草素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-槐糖苷、矮牵牛素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷、锦葵色素-3-O-桑布双糖苷-5-葡萄糖苷等含量较高，而白色花中的天竺葵素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷等含量较高。白色花中几乎检测不到天竺葵素-3-O-桑布双糖苷、天竺葵素-3-O-槐糖苷、飞燕草素-3-O-桑布双糖苷等。紫红色花中几乎检测不到飞燕草素-3-O-槐糖苷。同时，不同颜色洋紫荆花瓣中的类黄酮差异也较大，粉红色花中的芍药花素-3-O-葡萄糖苷、芍药花素-3,5-O-二葡萄糖苷、金圣草黄素-7-O-芸香糖苷-5-O-葡萄糖苷、异牡荆素-7-O-（6''-芥子酰）葡萄糖苷等含量较高。该研究结果与李群[2]的研究有所不同。研究表明，花青素合成通路对植物花色的形成有重要作用[24]。本研究基于KEGG通路分析，发现不同对比组筛选的花青素差异代谢物映射到花青素合成、植物代谢和次生代谢合成等3条通路，共18种物质，包含矮牵牛素-3-O-葡萄糖、飞燕草素-3-O-丙二酰葡萄糖苷、飞燕草素-3-O-对香豆酰葡萄糖苷等。不同对比组筛选的类黄酮差异代谢物映射到花青素合成、植物代谢、次生代谢合成等6条通路，共60种物质，包括白杨素、橙皮素-7-O-葡萄糖苷、短叶松素、高良姜素、异杞柳苷（根皮苷查尔酮）、柚皮素-7-O-葡萄糖苷（樱桃苷）、柚皮素-7-O-新橙皮糖苷（柚皮苷）、紫铆素、紫铆因、柚皮素、芹菜素-8-C-葡萄糖苷（牡荆素）、槲皮素等。
植物代谢途径交错复杂，不同差异代谢物在代谢途径中的作用还需进一步深入研究[16]。针对山茶（Camellia japonica L.）不同花色品种进行色素种类及含量的测定后发现，花青素生物合成途径相关的矢车菊素和矮牵牛素的含量在红色品种中显著增加[25]。上述结论和本研究结果相一致，即认为花青素合成途径在组织呈色中扮演了关键角色，同时该结论也和植物表型及生理研究结果相吻合。本研究仅初步探索了花青素、类黄酮在洋紫荆不同花色中的代谢差异，今后需进一步联合多组学技术研究洋紫荆不同花色的呈色机制。
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[1] Tryon AF, Lugardon B. Spores of the Pteridophyta:Surface, Wall structure and Diversity based on Electron Microscope Studies[M]. New York:Spriger-Verlag, 1991:20.
[2] Taylor WA. Ultrastructural analysis of sporoderm development in megaspores of Selaginella galeottii (Lycophyta)[J]. Plant Syst Evol, 1991, 174(3-4):171-182.
[3] Macluf CC, Morbelli MA, Giudice GE. Morphology and ultrastructure of megaspores and microspores of Isoetes savatieri Franchet (Lycophyta)[J]. Rev Palaeobot Palyno, 2003, 126(3):197-209.
[4] Lugardon B. Sur la formation du sporoderme chez Psilotum triquetrum Sw. (Psilotaceae)[J]. Grana, 1979, 18:145-165.
[5] Lehmann H, Neidhart HV, Schlenkermann G. Ultrastructural investigations on sporogenesis in Equisetum tluviatile[J]. Protoplasma, 1984, 123:38-47.
[6] Uehara K, Kurita S. Ultrastructure study of spore wall morphogenesis in Ophioglossum thermale Kom. var. nipponicum (Miyabe et Kudo) Nishida[J]. Bot Mag Tokyo, 1989, 102:413-427.
[7] Lugardon B. Sur la formation de l'exospore chez Osmunda regalis (L.)[J]. C R Acad Sci, 1969, 268:2879-2882.
[8] Parkinson BM. Spore wall development in Schizaea pectinata (Schizaeaceae:Pteridophyta)[J].Grana, 1995, 34:217-228.
[9] Lugardon B. Formation de l'exospore chez Blechnum spicant (L.) Roth[J]. C R Acad Sci, 1966, 262:2029-2031.
[10] 王全喜, 戴锡玲, 曹建国. 朝鲜介蕨孢子周壁发育的研究[J]. 西北植物学报, 2008, 28(2):289-297. Wang QX, Dai XL, Cao JG. Study on the development of perispore of Dryoathyrium coreanum (Christ) Tagawa[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2008, 28(2):289-297.
[11] 戴锡玲, 王赛赛, 曹建国, 王全喜. 红盖鳞毛蕨孢子囊早期发育与质体分化的研究[J]. 植物科学学报, 2016, 34(4):497-505. Dai XL, Wang SS, Cao JG, Wang QX. The development of sporangium at the early stage and plastid differentiation in Dryopteris erythrosora[J]. Plant Science Journal, 2016, 34(4):497-505.
[12] Southworth D. Exine development in Gerberu jamresuizii (Asteraceae)[J]. Amer J Bot, 1983, 70:1038-1047.
[13] Owens SJ, Dickinson HG. Pollen wall development in Gibasis (Commelinaceae)[J]. Ann Bot, 1983, 51:1-15.
[14] Uehara K, Kurita S. Ultrastructure of the sporoderm morphogenesis in Psilotum nudum (L.) Griseb[J]. Res Inst Evol Biol Sci Rep, 1986, 3:171-181.
[15] 王赛赛, 戴锡玲, 王全喜. 水蕨孢子囊早期发育的超微结构研究[J]. 西北植物学报,2011, 31(9):1758-1764. Wang SS, Dai XL, Wang QX. Ultrastructal studies on the early development of sporangium in Ceratopteris thalictroides (L.) Brongn.(Parkeriaceae)[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2011, 31(9):1758-1764.
[16] 王赛赛, 王全喜, 戴锡玲. 对马耳蕨孢子囊早期发育的显微结构研究[J]. 上海师范大学学报:自然科学版, 2012, 41(1):89-93. Wang SS, Wang QX, Dai XL. Light microscope studies on the early development of sporangium in Polystichum tsus-simense (Hook.) J. Smith(Dryopteridaceae)[J]. Journal of Shanghai Normal University:Natural Sciences Edition, 2012, 41(1):89-93.
[17] Pettitt JM. Ultrastructure and Cytochemistry of Spore Wall Morphogenesis[M]. London:Academic Press, 1979.
[18] Sheffield E, Bell PR. Current studies of the pteridophyte life cycle[J]. Bot Rev,1987, 53(4):442-490.
[19] Oldenhof HM, Willemse M. Functional compartments during sporangium development in the pteridophyte Cyrtomium falcatum (L. f.) Presl as expressed in tapetum function[J]. Plant Biol, 1999, 1:99-107.
[20] 李兆勇, 王亚男, 王新宇. 黑麦小孢子母细胞形成和发育过程中细胞胼胝质壁合成的变化[J]. 西北植物学报, 2001, 21(4):700-705. Li ZY, Wang YN, Wang XY. Change of callose wall synthesis during formation and development of microsporocytes in Secale cereale[J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2001, 21(4):700-705.
[21] Sheffield E, Bell PR. Ultrastructural aspects of sporogenesis in a fern, Pteridium aquilinurn (L.) Kuhn[J]. Ann Bot, 1979, 44:393-405.
[22] Heslop-Harrison J. The cytoplasm and its organelles during meiosis[M]//Heslop-Harrison J, ed. Pollen:Deve-lopment and Physiology. London:Butterworths, 1971.
[23] 戴锡玲, 曹建国, 王全喜,朱瑞良. 瓦韦孢子壁的结构和发育的研究[J]. 植物研究, 2006, 26(5):545-550. Dai XL, Cao JG, Wang QX,Zhu RL. The structure and development of sporoderm of Lepisorus thunbergianus (Kaulf.) Ching (Polypodiaceae)[J]. Bulletin of Botanical Research, 2006, 26(5):545-550.
[24] 戴锡玲, 曹建国, 王全喜. 水蕨孢子壁的形成和发育[J]. 植物学通报, 2008, 25(1):72-79. Dai XL, Cao JG, Wang QX. Formation and development of sporoderm of Ceratopteris thalictroides (L.) Brongn.(Parkeriaceae)[J]. Chinese Bulletin of Botany, 2008, 25(1):72-79.
[25] Parkinson BM. An investigation of sporangial development, sporogenesis and tapetal organisation in Schizuea pectiiiata (L.) Sw. (Schizaeaceae)[D]. Johannesburg:Witwatersrand University, 1991.
[26] Guilford WJ, Schneider DM, Labovitz J, Opella SJ. High resolution solid state C NMR spectroscopy of sporopollenins from different plant taxa[J]. Plant Physiol, 1988, 86(1):134-136.
[27] 戴锡玲, 王赛赛, 曹建国, 王全喜. 团扇蕨孢子发生和发育的显微观察[J]. 植物研究, 2011, 31(6):659-663. Dai XL, Wang SS, Cao JG, Wang QX. Morphogenesis and development of Gonocormus minutus (Blume) Bosch spore (Hymenophyllaceae)[J]. Bulletin of Botanical Research, 2011, 31(6):659-663.
[28] 戴锡玲, 王全喜, 朱瑞良, 曹建国. 凤丫蕨孢子壁的结构和发育研究[J]. 武汉植物学研究, 2010, 28(2):119-125. Dai XL, Wang QX, Zhu RL, Cao JG. Structure and development of the sporoderm in Coniogramme japonica (Thunb.) Diels (Hemionitidaceae)[J]. Journal of Wuhan Botanical Research, 2010, 28(2):119-125.
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